Home

Нейроны пластинки Х спинного мозга

Автор: Порсева В.В., Шилкин В.В.

  Индекс УДК: УДК 611.822.018: 616-091.81 | Страницы: 5–10 | Полный текст статьи. PDF файл | Скачать PDF 

Аннотация:

Подробные сведения о положении, форме и функции нейронов пластинки Х спинного мозга различных животных свидетельствуют о наличии клеток автономной нервной системы (центральное ядро), симпатоцитов, премоторных интернейронов и эктопических первичных чувствительных нейронов. С достаточной полнотой проанализированы резуль- таты изучения в нейронах активности ацетилхолинестеразы и никотинамидадениндинуклеотидфосфат-диафоразы гистохимическими методами, холинацетилтрансферазы, γ-аминомасляной кислоты, нитроксидсинтазы и кальбиндина иммуногистохимическими методами, подкрепленные иллюстрациями из собственных исследований. Приведенные данные позволяют авторам считать, что вокруг центрального канала спинного мозга функционирует сложный кластер премоторных нейронов, оказывающих возбуждающее и тормозное влияние на мотонейроны, преганглионарные нейроны автономной нервной системы, симпатоциты, осуществляющие иннервацию сосудов спинного мозга, а также первичные чувствительные нейроны.

Ссылки на авторов:

В.В. Порсева, В.В. Шилкин
Ярославский государственный медицинский университет (150000, г. Ярославль, ул. Революционная, 5)

Порсева Валентина Вячеславовна – канд. мед. наук, преподаватель кафедры патологической физиологии ЯГМУ; e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.



1. Матвеева Н.Ю., Калиниченко С.Г., Пущин И.И., Мотав кин П.А. Роль оксида азота в апоптозе нейронов сетчатки гла за плодов человека // Морфология. 2006. Т. 129, № 1. С. 42–48.
2. Мотавкин П.А., Черток В.М. Иннервация мозга // Тихооке анский медицинский журнал. 2008. № 3. С. 11–23.
3. Пивченко П.Г. Структурная организация серого вещества спинного мозга человека и млекопитающих животных: ав тореф. дис. ... д-ра мед. наук. Харьков, 1993. 38 с.
4. Порсева В.В. Возрастные преобразования ядер спинного мозга и спинномозговых ганглиев в норме и в условиях химической деафферентации: автореф. дис. … канд. мед. наук. Ярославль, 2006. 19 с.
5. Порсева В.В. Кальбиндин-иммунореактивные интерней роны промежуточной области и вентрального рога серого вещества спинного мозга белой крысы // Морфология. 2014. T. 146, № 6. C. 21–26.
6. Порсева В.В., Шилкин В.В. NADPH-диафоразо-позитивные структуры спинного мозга и спинномозговых узлов // Мор фология, 2010. Т. 137, № 2. С. 13–17.
7. Порсева В.В., Шилкин В.В., Стрелков А.А. [и др.]. Субпо пуляции кальбиндин-иммунореактивных интернейронов дорсального рога спинного мозга мышей // Цитология. 2014. Т. 56, № 8. С. 612–618.
8. Черток В.М., Коцюба А.Е. Распределние NADPH-диафоразыи нейрональной NO-синтазы в ядрах продолговатого мозга // Морфология. 2013. Т. 144, № 6. С. 9–14.
9. Anelli R., Heckman C.J. The calcium binding proteins calbindin, parvalbumin, and calretinin have specific patterns of expression in the gray matter of cat spinal cord // J. Neurocytology. 2005. Vol. 34, No. 6. P. 369–385.
10. Antal M., Freund T.F., Polgár E. Calcium-binding proteins, parvalbumin- and calbindin-D28k-immunoreactive neurons in the rat spinal cord and dorsal root ganglia: a light and electron microscopic study // J. Comp. Neurol. 1990. Vol. 295, No. 3. P. 467–484.
11. Banik, N.L., Matzelle, D.C., Gantt-Wilford G. [et al.]. Increased calpain content and progressive degradation of neurofilament protein in spinal cord injury // Brain Res. 1997. Vol. 752, No. 1–2. P. 301–306.
12. Barber R. P., Phelps P. E., Houser C. R. [et al.]. The morphology and distribution of neurons containing choline acetyltransferase in the adult rat spinal cord: an immunocytochemical study // J. Comp. Neurol. 1984. Vol. 229. P. 329–346.
13. Barber R.P., Vaughn J.E., Roberts E. The cytoarchitecture of GABAergic neurons in rat spinal cord // Brain Res. 1982. Vol. 238. P. 305–328.
14. Caillard O., Moreno H., Schwaller B. [et al.]. Role of the calciumbinding protein parvalbumin in short-term synaptic plasticity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. Vol. 97, No. 24. P. 13372– 13377.
15. Calka J., Zalecki M., Wasowicz K. [et al.]. A comparison of the distribution and morphology of ChAT-, VAChT-immunoreactive and AChE-positive neurons in the thoracolumbar and sacral spinal cord of the pig // Veterinarni Medicina. 2008. Vol. 53, No. 8. P. 434–444.
16. Deuchars S. A., Milligan C. J., Stornetta R. L. [et al.]. GABAergic neurons in the central region of the spinal cord: a novel substrate for sympathetic inhibition // Neurosci. 2005. Vol. 25, No. 5. P. 1063–1070.
17. Fahandejsaadi A., Leung E., Rahaii R. [et al.]. Calbindin-D28K, parvalbumin and calretinin in primate lower motor neurons // Neuroreport. 2004. Vol. 15, No. 3. P. 443–448.
18. Freire M.A.М., Tourinho S.C., Guimarães J.S. [et al.]. Histochemical characterization, distribution and morphometric analysis of NADPH diaphorase neurons in the spinal cord of the agouti // Front. Neuroanat. 2008. Vol. 2. doi: 10.3389/ neuro.05.002.2008.
19. Gookin J.L., Rhoads J.M., Argenzio R.A. Inducible nitric oxide synthase mediates early epithelial repair of porcine ileum // Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2002. Vol. 283, No. 1. P. 157–168.
20. Gotts J., Edwards I., Deuchars S.A., Deuchars J. Co-localisation of the enzymes synthesising GABA and acetylcholine in the mouse spinal cord // Proc. Physiol. Soc. 31. 2014. PCA047.
21. Grant G., Koerber H.R. Spinal cord cytoarchitecture // The Rat Nervous System. 2004. Vol. 3. P. 121–128.
22. Jankowska E., Bannatyne B.A., Stecina K. [et al.]. Commissural interneurons with input from group I and II muscle afferents in feline lumbar segments: neurotransmitters, projections and target cells // J. Physiol. 2009. Vol. 587, No. 2. P. 401–418.
23. Kim J.J., Chang I.Y., Chung Y.Y. [et al.]. Immunohistochemical studies on the calbindin D-28K and parvalbumin positive neurons in the brain stem and spinal cord after transection of spinal cord of rats // Korean J. Phys. Anthropol. 2002. Vol. 15, No. 4. P. 305–329.
24. Lee J.C., Hwang I.K., Cho J.H. [et al.]. Expression and changes of calbindin D-28k immunoreactivity in the ventral horn after transient spinal cord ischemia in rabbits // Neurosci Lett. 2004. Vol. 369, No. 2. P. 145–149.
25. Marsala J., Vanický I., Marsala M. [et al.]. Reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate diaphorase in the spinal cord of dogs // Neurosci. 1998. Vol. 85, No. 3. P. 847–862.
26. Megias M., Alvarez-Otero R., Pombal M.A. Calbindin and calretinin immunoreactivities identify different types of neurons in the adult lamprey spinal cord // J. Comp. Neurol. 2003. Vol. 455, No. 1. P. 72–85.
27. Morona R., Lopez J.M., Gonzalez A. Calbindin-D28k and calretinin immunoreactivity in the spinal cord of the lizard Gekko gecko: Colocalization with choline acetyltransferase and nitric oxide synthase // Brain Res. Bull. 2006. Vol. 69, No. 5. P. 519–534.
28. Motavkin P.A., Bakhtinov A.P. Postnatal development of human spinal cord ependymal innervation // Neuroscience and Behavioral Physiology. 1973. Vol. 6, No. 3. Р. 253–259.
29. Motavkin P.A., Dovbysh T.V. Cholinergic nervous apparatus of pia mater and brain blood vessels // Bull. Exp. Biol, Med. 1970. Vol. 70, No. 7. Р. 113–116.
30. Nagy J.I., Yamamoto T., Jordan L.M. Evidence for the cholinergic nature of C-terminals associated with subsurface cisterns in α-motoneurons of rat // Synapse. 1993. Vol. 15, No. 1. Р. 17–32.
31. Nahin R.L., Madsen A.M., Giesler G J. Anatomical and physiological studies of the gray matter surrounding the spinal cord central canal // Journal Comp. Neurol. 1983. Vol. 220. P. 321–335.
32. Polgar E., Sardella T.C., Tiong S.Y. [et al.]. Functional differences between neurochemically defined populations of inhibitory interneurons in the rat spinal dorsal horn // Pain. 2013. Vol. 154, No. 12. P. 2606–2615.
33. Porseva V.V. Topography and morphometric characteristics of NF200+ neurons in the gray matter of the spinal cord after capsaicin deafferentation // Neurosci. and Behav. Physiol. 2014. Vol. 44, No. 8. P. 919–923.
34. Schoenen J., Faull R.L.M. Spinal cord: cyto- and chemoarchitecture // The Human Nervous System. 2004. Vol. 2. P. 190–232.
35. Stepien A.E., Tripodi M., Arber S. Monosynaptic rabies virus reveals premotor network organization and synaptic specificity of cholinergic partition cells // Neuron. 2010. Vol. 68. P. 456–472.
36. Todd A.J. Neuronal circuitry for pain processing in the dorsal horn // Nature Reviews. 2010. Vol. 11. P. 823–836.
37. van Dijken H., Dijk J., Voorn P., Holstege J.C. Localization of dopamine D2 receptor in rat spinal cord identified with immunocytochemistry and in situ hybridization // Eur. J. of Neurosci. 1996. Vol. 8. P. 621–628.
38. Zagoraiou L., Akay T., Martin J.F. [et al.]. A cluster of cholinergic premotor interneurons modulates mouse locomotor activity // Neuron. 2009. Vol. 64. P. 645–662.

ИЗДАТЕЛЬСТВО: Медицина ДВ

Год основания: 1997  |  Выпусков в год: 4, Статей в выпуске: 30  |  ISSN печатной версии: 1609-1175  |  Подписной  индекс: 18410 (Агентство “Роспечать”)  |  Тираж: 1000 экз.

 

Close Panel