Home

Структурная организация кровеносной системы матки

Автор: Храмова И.А., Черток В.М., Коцюба А.Е., Черток А.Г.

  Индекс УДК: 618.14:611.16 | Страницы: 13–23 | Полный текст статьи. PDF файл | Скачать PDF 

Аннотация:

В обзоре анализируются данные литературы и собственные материалы авторов по организации микроциркуляторного русла матки и его регуляции. Обосновывается гипотеза, согласно которой приспособление микроциркуляторной системы матки к меняющимся условиям функционирования органа обеспечивается регуляторными механизмами, действующими опосредованно, путем изменения просвета приносящих и выносящих сосудов, или непосредственно через структурные элементы стенки сосудов, преимущественно эндотелий. Обсуждается роль в этом процессе газотрансмиттеров: оксида азота, монооксида углерода, сероводорода.

Ссылки на авторов:

И.А. Храмова, В.М. Черток, А.Е. Коцюба, А.Г. Черток
Тихоокеанский государственный медицинский университет (690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2)

Черток Виктор Михайлович – д-р мед. наук, профессор, заведующий кафедрой анатомии человека ТГМУ; e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.


1. Афанасьев А.А., Черток В.М. Использование автоматизиро ванной системы анализа изображений ALLEGRO-MC для количественной биомикроскопии микроциркуляторного ру сла // Тихоокеанский медицинский журнал. 2004. № 2. С. 82–86. .
2. Гецова В.М. Проницаемость барьеров матки и плаценты для серотонина и флуоресцина натрия: автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 1972. 19 с.
3. Гусакова С.В., Ковалев И.В., Смаглий Л.В. [и др.]. Газовая сигнализация в клетках млекопитающих // Успехи физио логических наук. 2015. Т. 46, № 4. С. 53–73.
4. Козлов В.И. Капилляроскопия в клинической практике. М.: Практическая медицина, 2015. 232 с.
5. Коков Л.С., Ситкин И.И., Самойлова Т.Е. Артериальное кровоснабжение матки и ее придатков в норме, в различ ные возрастные периоды и при патологических состояниях применительно к эндоваскулярной окклюзии маточной артерии // Гинекология. 2004.Т. 6, № 5. С. 259–262.
6. Коцюба А.Е., Черток В.М., Черток А.Г. Возрастные особенно сти СО-опосредованной реакции пиальных артерий разного диаметра у крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины // 2016. Т. 162, № 11. С. 612–617.
7. Коцюба А.Е., Черток В.М., Бабич Е.В., Коцюба Е.П. Осо бенности цитохимии тучных клеток в некоторых органах крысы // Цитология. 2008. Т. 50, № 12. С. 1023–1029.
8. Куприянов В.В., Банин В.В., Алимов Г.А. Организация и транспортные свойства эндотелия микрососудов // Вест ник АМН СССР. 1988. № 2. С. 4–9.
9. Мотавкин П.А., Ломакин А.В., Черток В.М. Капилляры головного мозга. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1983. 140 с.
10. Недобыльская Ю.П. Гистохимия АТФаз капиллярного ру сла матки крыс при комбинированном действии лазерного излучения и женских половых гормонов: дис. … канд. мед. наук. Владивосток. 1994. 183 с.
11. Немков Ю.К. Функциональная морфология капиллярного русла матки крыс при воздействии источников излучения оптическо го диапазона: дис. … канд. мед. наук. Владивосток. 1991. 212 с.
12. Немков Ю.К., Черток А.Г., Черток В.М. Изменения капилляр ного русла эндометрия матки крыс в течение эстрального цикла (гистохимическое исследование) // Морфология. 1992. Т. 102. № 4. С. 56–59.
13. Орлов В.И., Овсянников В.Г. Микроциркуляция в серозном покрове матки у интактных крыс // Патологическая физи ология и экспериментальная терапия. 1984. № 2. С. 66–67.
14. Ракицкая В.В., Проймина Ф.И., Чудинов Ю.В. Адренергиче ская иннервация матки крысы в разные фазы эстрального цикла // Физиологический журнал СССР им. И.М. Сеченова. 1986. Т. 72, № 7. С. 987–991.
15. Реутов В.П., Черток В.М. Новые представления о роли веге тативной нервной системы и систем генерации оксида азота в сосудах мозга // Тихоокеан. мед. журн. 2016. № 2. С. 10–19.
16. Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Косицын Н.С. Проблемы оксида азота и цикличности в биологии и медицине // Успехи сов ременной биологии. 2005. Т. 125, № 1. С. 41–65.
17. Чернух А.М., Александров П.Н., Алексеев О.В. Микроцир куляция. М.: Медицина, 1975. 456 с.
18. Черток А.Г. Гистохимическая характеристика сосудисто-ка пиллярного русла матки человека и животных: дис. … канд. мед. наук. Владивосток. 1987. 216 с.
19. Черток А.Г., Немков Ю.К., Черток В.М. Функциональная морфология капиллярного русла матки после введения синестрола // Бюллетень экспериментальной биологии и ме дицины. 1990. Т. 108, № 6. С. 605–607.
20. Черток В.М. Тучные клетки наружной оболочки артерий основания головного мозга // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1980. Т. 79, № 11. С. 72–79.
21. Черток В.М. Гистохимическая характеристика транспортной АТФ-азы в капиллярах мозга человека // Бюл. эксперим. би ологии и медицины. 1984. Т. 97, № 3. С. 375–377.
22. Черток В.М. Возрастные изменения капилляров головного мозга человека (гистохимическое исследование) // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1985. Т. 88, № 2. С. 28–34.
23. Черток В.М., Зенкина В.Г. Регуляция функций яичников: участие газовых трансмиттеров NO, СО и H2S // Успехи физиологических наук. 2015. Т. 46, № 4. С. 74–89.
24. Черток В.М., Коцюба А.Е. Структурная организация буль барного отдела сердечно-сосудистого центра. Владивосток: Медицина ДВ, 2013. 164 с.
25. Черток В.М., Коцюба А.Е. Возрастные особенности вазомо торной регуляции артерий мягкой оболочки мозга у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2010. Т. 149, № 3. С. 340–344.
26. Черток В.М., Коцюба А.Е. Особенности распределения фер ментов синтеза H2S в стенке церебральных артерий у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2012. Т. 154, № 7. С. 116–120.
27. Черток В.М., Коцюба А.Е. Нейрохимическая организация внутриядерных нейронов продолговатого мозга у нормо- и ги пертензивных крыс // Нейрохимия. 2016. Т. 33, № 3. С. 244–252.
28. Черток В.М., Черток А.Г. Регуляторный потенциал капилля ров мозга // Тихоокеанский мед. журнал. 2016. № 2. С. 72–80.
29. Черток В.М., Зенкина В.Г., Каргалова Е.П. Функциональная морфология яичника. Владивосток: Медицина ДВ, 2015. 154 с.
30. Черток В.М., Коцюба А.Е., Коцюба Е.П. Гемоксигеназа-2 в нейронах головного и спинного мозга человека // Вестник РАМН. 2012. № 6. С. 36–41.
31. Черток В.М., Коцюба А.Е., Черток А.Г. Распределение ге моксигеназ в стенке артерий мягкой оболочки мозга крыс // Морфология. 2017. Т. 151, № 1. С. 33–38.
32. Черток В.М., Невзорова В.А., Захарчук Н.В. Сравнительное изучение HIF-1A- и HIF-2A-иммунопозитивных нейронов и капилляров в коре головного мозга крыс при тканевой гипоксии // Бюллетень экспериментальной биологии и ме дицины. 2018. Т. 165, № 4. С. 513–517.
33. Черток В.М., Старцева М.С., Коцюба А.Е. Применение пик сельного метода в количественной оценке результатов ги стохимических исследований // Морфология. 2012. Т. 142. № 5. С. 71–75.
34. Черток В.М., Черток А.Г., Зенкина В.Г. Эндотелиозависи мая регуляция ангиогенеза // Цитология. 2017. Т. 59, № 4. С. 243–258.
35. Черток В.М., Коцюба А.Е., Старцева М.С., Коцюба Е.П. Два пула интернейронов в бульбарном отделе сердечно-сосудистого цен тра крыс // Доклады Академии наук. 2015. Т. 463, № 5. С. 619–623.
36. Черток В.М., Недобыльская Ю.П., Немков Ю.К., Шаку нов С.А. Влияние лазерного излучения на фоне фолликулина на капилляры матки крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1997. Т. 123, № 6. С. 718–720.
37. Ширинский В.П. Молекулярная физиология эндотелия и механизмы проницаемости сосудов // Успехи физиологических наук. 2011. Т. 42, № 1. С. 18–32.
38. Ablove T.S., Austin J.L., Phernetton T.M., Magness R.R. Effects of endogenous ovarian estrogen versus exogenous estrogen replacement on blood flow and ERβα and ERβ levels in the bladder // Reprod. Sci. 2009. Vol. 16, No. 7. Р. 657–664.
39. Acevedo C.H., Ahmed A. Hemeoxygenase-1 inhibits human myometrial contractility via carbon monoxide and is upregulated by progesterone during pregnancy // J. Clin. Invest. 1998. Vol. 101. Р. 949–955.
40. Alexandreanu I.C., Lawson D.M. Effects of chronic administration of a heme oxygenase substrate or inhibitor on progression of the estrous cycle, pregnancy and lactation of Sprague-Dawley rats // Life Sci. 2002. Vol. 29, No. 2. P.153–162.
41. Ali M.Y., Ping C.Y., Mok Y.Y. [et al.]. Regulation of vascular nitric oxide in vitro and in vivo; a new role for endogenous hydrogen sulphide? // Br. J. Pharmacol. 2006. Vol. 149. P. 625–634.
42. Barber A., Robson S.C., Lyall F. Hemoxygenase and nitric oxide synthase do not maintain human uterine quiescence during pregnancy // Am. J. Pathol. 1999. Vol. 155, No. 3. Р. 831–840.
43. Bertler A., Falck B., Rosengren J. The direct demonstration of a barrier mechanism in the brain capillaries // Acta Pharmacol. Тoxicol. 1966. Vol. 20. P. 317–321.
44. Boehning D., Snyder S.H. Novel neural modulators // Ann. Rev. Neurosci. 2003. Vol. 26. P. 105–131.
45. Byers M.J., Zangl A., Phernetton T.M. [et al.]. Endothelial vasodilator production by ovine uterine and systemic arteries: ovarian steroid and pregnancy control of ERalpha and ERbeta levels // J. Physiol. 2005. Vol. 565 (Pt1). Р. 85–99.
46. Carter T.D., Ogden D. Acetylcholine-stimulated changes of membrane potential and intracellular Ca2+ concentration recorded in endothelial cells in situ in the isolated rat aorta // Pflugers Arch. 1994. Vol. 428. P. 476–484.
47. Cicinelli E., Einer-Jensen N., Galantino P. [et al.]. The vascular cast of the human uterus: from anatomy to physiology // Ann. NY Acad. Sci. 2004. Vol. 1034. Р. 19–26.
48. D'Emmanuele di Villa Bianca R., Fusco F., Mirone V. [et al.]. The role of the hydrogen sulfide pathway in male and female urogenital system in health and disease // Antioxid. Redox Signal. 2017. Vol. 27, No. 10. Р. 654–668.
49. Freedman J.E., Loscalzo J. Nitric oxide and its relationship to thrombotic disorders // J. Thromb. Haemost. 2003. Vol. 1, No. 6. Р. 1183–1188.
50. Garris D.R. Uterine blood flow, pH, and pCO2 during nidation in the guinea pig: ovarian regulation // Endocrinology. 1984. Vol. 114, No. 4. Р. 1219–1224.
51. Garris D.R., McConnaughey M.M., Dar M.S. Estrogen modulation of uterine adrenergic-cholinergic interaction: effects on vasoactivity and adrenergic receptors in the guinea pig // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1986. Vol. 239, No. 1. Р. 270–278.
52. Guzman M.A., Navarro M.A., Carnicer R. [et al.]. Cystathionine β-synthase is essential for female reproductive function // Human Molecular Genetics. 2006. Vol. 15. P. 3168−3176.
53. Harvey C.A., Owen D.A. Changes in uterine and ovarian blood flow during the oestrous cycle in rats // J. Endocrinol. 1976. Vol. 71, No. 3. Р. 367–369.
54. Herrnberger L., Ebner K., Junglas B. [et al.]. The role of plasmalemma vesicle-associated protein (PLVAP) in endothelial cells of Schlemm's canal and ocular capillaries // Exp. Eye Res. 2012. Vol. 105. Р. 27–33.
55. Kardon R.H., Farley D.B., Heidger P.M. [et al.]. Intraarterial cushions of the rat uterine artery: a scanning electron microscope evaluation utilizing vascular casts // Anat. Rec. 1982. Vol. 203, No. 1. Р. 19–29.
56. Kisu I., Mihara M., Banno K. [et al.]. A new surgical technique of uterine auto-transplantation in cynomolgus monkey: preliminary report about two cases // Arch. Gynecol. Obstet. 2012. Vol. 285. Р. 135–140.
57. Krzymowski T., Stefańczyk-Krzymowska S. The role of the endometrium in endocrine regulation of the animal oestrous cycle // Reprod. Domest. Anim. 2008. Vol. 43, No. 1. Р. 80–91.
58. Kukoba T.V., Pivovar S.M., Moibenko A.A. Participation of carbon monooxide system in regulation of coronary vessels tone // Clin. Experim. Pathol. 2006. Vol. 5, No. 4. P. 46–49.
59. Lechuga T.J., Zhang H.H., Sheibani L. [et al.]. Estrogen replacement therapy in ovariectomized nonpregnant ewes stimulates uterine artery hydrogen sulfide biosynthesis by selectively upregulating Cystathionine β-Synthase expression // Endocrinology. 2015. Vol. 156, No. 6. P. 2288–2298.
60. Magness R.R., Shaw C.E., Phernetton T.M. [et al.]. Endothelial vasodilator production by uterine and systemic arteries, II: pregnancy effects on NO synthase expression // Am. J. Physiol. 1997. Vol. 272. P. H1730–H1740.
61. Marazioti A., Bucci M., Ciro C. [et al.]. Inhibition of nitric oxide-stimulated vasorelaxation by carbon monoxide-releasing molecules // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2011. Vol. 31. P. 2570–2576.
62. Marshall S.A., Senadheera S.N., Jelinic M. [et al.]. Relaxin Deficiency leads to uterine artery dysfunction during pregnancy in mice // Front. Physiol. 2018. Vol. 22, No. 9. P. 255–267.
63. Mayra P.R., Rosalina V.L., López G. [et al.] Regulation of uterine blood flow. I. Functions of estrogen and estrogen receptor α/β in the uterine vascular endothelium during pregnancy // Rev. Chil. Obstet. Ginecol. 2014. Vol. 79, No. 2. Р. 129–139.
64. Mehta D., Malik A.B. Signaling mechanisms regulating endothelial permeability // Physiol. Rev. 2006. Vol. 86, No. 1 P. 279–367.
65. Mitidieri E., Tramontano T., Donnarumma E. [et al.]. l-Cys/CSE/ H2S pathway modulates mouse uterus motility and sildenafil effect // Pharmacol Res. 2016. Vol. 111. Р. 283–289.
66. Morris A.W., Sharp M.M., Albargothy N.J. Vascular basement membranes as pathways for the passage of fluid into and out of the brain // Acta Neuropathol. 2016. Vol. 131, No. 5. Р. 725–736.
67. Nagpure B.V., Bian J.S. Interaction of hydrogen sulfide with nitric oxide in the cardiovascular system // Oxid Med. Cell Longev. 2016. Vol. 2016. Article ID: 6904327.
68. Nelson Sh.H., Steinsland O.S., Wang Yu. [et al.]. Increased nitric oxide synthase activity and expression in the human uterine artery during pregnancy // Circ. Res. 2000. Vol. 87. Р. 406–411.
69. Němeček D., Dvořáková M., Sedmíková M. Heme oxygenase/ carbon monoxide in the female reproductive system: an overlooked signalling pathway // Int. J. Biochem. Mol. Biol. 2017. Vol. 8, No. 1. P. 1–12.
70. Ogawa K.S., Fujimotok K., Ogawa K. Ultracytochemical studies of adenosine nucleotides in aortiс endothelial and smooth muscle cells – Ca2+-ATPase and Na+, К+-ATFase // Acta Histochem. Cytochem. 1986. Vol. 19. Р. 601–612.
71. Pastore M.B., Talwar S., Conley M.R. [et al.]. Identification of differential ER-alpha versus ER-beta mediated activation of eNOS in ovine uterine artery endothelial cells // Biol. Reprod. 2016. Vol. 94, No. 6. Р. 139.
72. Sheibani L., Lechuga T.J., Zhang H. [et al.]. Augmented H2S production via cystathionine-beta-synthase upregulation plays a role in pregnancy-associated uterine vasodilation / Biol. Reprod. 2017. Vol. 96, No. 3. P. 664–672.
73. Song Y., Fukuda N., Bai C. [et al.]. Role of aquaporins in alveolar fluid clearance in neonatal and adult lung, and in oedema formation following acute lung injury: studies in transgenic aquaporin null mice // J. Physiol. 2000. Vol. 525, No. 3. P. 771–779.
74. Stahl W.L., Baskin D.G. Histochemistry of ATPases // J. Histochem. Cytochem. 1990. Vol. 38, No. 8. Р. 1099–1122.
75. Theoharides T.C., Stewart J.M. Genitourinary mast cells and survival // Trans. Androl. Urol. 2015. Vol. 4, No. 5. Р. 579–586.
76. Toda N., Ayajiki K., Okamura T. Cerebral blood flow regulation by nitric oxide: recent advances // Pharmacol. Rev. 2009. Vol. 61, Nо. 1. Р. 62–97.
77. Toda N., Okamura T. Modulation of renal blood flow and vascular tone by neuronal nitric oxide synthase-derived nitric oxide // J. Vasc. Res. 2011. Vol. 48, Nо. 1. Р. 1–10.
78. Tropea T., De Francesco E.M., Rigiracciolo D. [et al.]. Pregnancy Augments G Protein Estrogen Receptor (GPER) Induced Vasodilation in Rat Uterine Arteries via the Nitric Oxide - cGMP Signaling Pathway // PLoS One. 2015. Vol. 10, No. 11. Р. e0141997.
79. Väisänen-Tommiska M., Butzow R., Ylikorkala O., Mikkola T.S. Mifepristone-induced nitric oxide release and expression of nitric oxide synthases in the human cervix during early pregnancy // Hum. Reprod. 2006. Vol. 21, No. 8. Р. 2180–2184.
80. Wang H., Wang A.X., Aylor K. [et al.]. Nitric oxide directly promotes vascular endothelial insulin transport // Diabetes. 2013. Vol. 62, No. 12. P. 4030–4042.
81. Woidacki K., Jensen F., Zenclussen A.C. Mast cells as novel mediators of reproductive processes // Front. Immunol. 2013. Vol. 4. Р. 29–36.
82. Yang G., Wu B. Jiang L. [et al.]. H2S as a physiologic vasorelaxant: hypertension in mice with deletion of cystathionine -lyase // Science. 2008. Vol. 322. Р. 587–590.
83. Zenclussen M.L., Casalis P.A., Jensen F. [et al.]. Hormonal fluctuations during the estrous cycle modulate heme oxygenase-1 expression in the uterus // Front. Endocrinol. 2014. Vol. 5. P. 32.
84. Zhang H.H., Chen J.C., Sheibani L. [et al.]. Pregnancy augments VEGF-stimulated in vitro angiogenesis and vasodilator (NO and H2S) production in human uterine artery endothelial cells // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2017. Vol. 102, No. 7. P. 2382–2393.

ИЗДАТЕЛЬСТВО: Медицина ДВ

Год основания: 1997  |  Выпусков в год: 4, Статей в выпуске: 30  |  ISSN печатной версии: 1609-1175  |  Подписной  индекс: 18410 (Агентство “Роспечать”)  |  Тираж: 1000 экз.

 

Close Panel