Home

Альфа-герпесвирусы: современный взгляд на структуру

Автор: Маркелова Е.В., Кныш С.В., Невежкина Т.А., Байбарина Е.В.

  Индекс УДК: 616.523:575 | Страницы: 5–9 | Полный текст статьи. PDF файл | Скачать PDF 

Аннотация:

Обзор публикаций, посвященных альфа-герпесвирусам, их таксономии, морфологии и жизненному циклу. Среди альфа-герпесвирусов выделяют три вида, способных вызывать антропонозные инфекции: вирус простого герпеса 1-го и 2-го типов и вирус ветряной оспы. Несмотря на общность структуры, заболевания, вызываемые этими вирусами, отличаются как патогенезом, так и клиническими проявлениями. Из-за сложностей моделирования ветряной оспы изучение более доступных для моделирования вирусов простого герпеса становится важной задачей для научного общества.

Ссылки на авторов:

Е.В. Маркелова1, С.В. Кныш1, Т.А. Невежкина1, Е.В. Байбарина2
1 Тихоокеанский государственный медицинский университет (690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2),
2 Профессорская клиника Юцковских (690001, г. Владивосток, ул. Металлистов, 3)

Кныш Сергей Васильевич – аспирант кафедры нормальной и патологической физиологии ТГМУ; e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.


1. Астрелина Т. А., Яковлева М. В., Шахпазян Н. К. [и др.]. Значение определения герпесвирусов человека в мезенхи мальных стволовых клетках костного мозга и плаценты для клинического применения // Гены и клетки. 2012. № 4. С. 68–72.
2. Луценко М. Т., Гориков И.Н. Некоторые сведения о морфо логии герпес-вирусов и их свойствах // Бюл. физ. и пат. дых. 2010. № 38. С. 74–77. 
3. Персистирующие вирусные инфекции: этиология и имму нопатогенез / Маркелова Е.В., Скляр Л.Ф., Просекова Е.В. [и др.]. Владивосток: Медицина ДВ, 2016. 160 с. 
4. Сергиенко Е.Н. Современный взгляд на ветряную оспу у де тей // Медицинские новости. 2016. № 2. С. 4–8. 
5. Скляр Л.Ф., Маркелова Е.В., Нагорная А.В., Сотниченко С.А. Особенности клиники и состояния врожденного иммуни тета при сочетанных герпесвирусных менингоэнцефалитах у ВИЧ-инфицированных пациентов // Тихоокеанский меди цинский журнал. 2014. № 1. С. 82–85. 
6. Собчак Д.М., Волский Н.Е., Свинцова Т.А. [и др.]. Иммунная система человека и особенности патогенеза герпетической инфекции (обзор) // Современные технологии в медицине. 2014. № 3. С. 118–127. 
7. Тотолян Г. Г., Сторожаков Г. И., Федоров И. Г. [и др.]. Вирусы группы герпеса и поражения печени // Лечебное дело. 2009. № 2. С. 4–11. 
8. Agostini S., Mancuso R., Bagilio F., Clerici M. A protective role for herpes simplex virus type-1-specific humoral immunity in Alzheimer's Disease // Expert. Rev. Anti. Infect. Ther. 2017. Vol. 15, No. 2. P. 89–91.
9. Albecka A., Owen D.J., Ivanova L. [et al.]. Dual function of the pUL7-pUL51 tegument protein complex in herpes simplex virus 1 infection // J. Virol. 2017. Vol. 91, No. 2. P. e02196–16.
10. Alibek K., Baiken Y., Kakpenova A. [et al.]. Implication of human herpesviruses in oncogenesis through immune evasion and suppression // Infect. Agent Cancer. 2014. Vol. 9. No. 3. doi:
10.1186/1750-9378-9-3.
11. Arvin A.M., Moffat J.F., Sommer M. [et al.]. Varicella-zoster virus T cell tropism and the pathogenesis of skin infection. // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2010. Vol. 342. P. 189–209.
12. Barzilai A., Zivony-Elborn I., Sarid R. [et al.]. The herpes simplex virus type 1 vhs-UL41 gene secures viral replication by temporarily evading apoptotic cellular response to infection: Vhs-UL41 activity might require interactions with elements of cellular mRNA degradation machinery // J. Virol. 2006. Vol. 80, No. 1. P. 505–513.
13. Bourgade K., Le Page A., Bocti C. [et al.]. Protective effect of amyloid-β peptides against herpes simplex virus-1 infection in a neuronal cell culture model // J. Alzheimers Dis. 2016. Vol. 50, No. 4. P. 1227–1241.
14. Bowman B.R., Baker M.L., Rixon F.J. [et al.]. Structure of the herpesvirus major capsid protein // EMBO J. 2003. Vol. 22, No. 4. P. 757–765.
15. Breuer J., Grose C., Norberg P. [et al.]. A proposal for a common nomenclature for viral clades that form the species varicella-zoster virus: Summary of VZV Nomenclature Meeting 2008, Barts and the London School of Medicine and Dentistry, 24–25 July 2008 // J. Gen. Virol. 2010. Vol. 91, No. 4. P. 821–828.
16. Brown J.C., Newcomb W.W. Herpesvirus capsid assembly: Insights from structural analysis. // Current Opinion in Virology. 2011. Vol. 1, No. 2. P. 142–149.
17. Burrel S., Ait-Arkoub Z., Voujon D. [et al.]. Molecular characterization of herpes simplex virus 2 strains by analysis of microsatellite polymorphism // J. Clin. Microbiol. 2013. Vol. 51, No. 11. P. 3616–3623.
18. Chaudhuri V., Sommer M., Rajamani J. [et al.]. Functions of varicella-zoster virus ORF23 capsid protein in viral replication and the pathogenesis of skin infection // J. Virol. 2008. Vol. 82, No. 20. P. 10231–10246.
19. Chiara G.D., Racaniello M., Mollinari C. [et al.]. Herpes simplex virus-type1 (HSV-1) impairs DNA repair in cortical neurons // Front. Aging Neurosci. 2016. Vol. 8. doi: 10.3389/fnagi.2016.00242.
20. Cohen J.I. The varicella-zoster virus genome // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2010. Vol. 342. P. 1–14.
21. Dolan A., Jamieson F.E., Cunningham C. [et al.]. The genome sequence of herpes simplex virus type 2 // J. Virol. 1998. Vol. 72, No. 3. P. 2010–2021.
22. Ecker J.R., Hyman R.W. Varicella zoster virus DNA exists as two isomers // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1982. Vol. 79, No. 1. P. 156–160.
23. Grahn A., Studahl M., Nilsson S. [et al.]. Varicella-zoster virus (VZV) glycoprotein E is a serological antigen for detection of intrathecal antibodies to VZV in central nervous system infections, without cross-reaction to herpes simplex virus 1 // Clinical and Vaccine Immunology. 2011. Vol. 8, No. 18. P. 1336–1342.
24. Grundhoff A., Sullivan C.S. Virus-encoded microRNAs // Virology. 2011. Vol. 411, No. 2. P. 325–343.
25. Han Z., Liu X., Chen X. [et al.]. miR-H28 and miR-H29 expressed late in productive infection are exported and restrict HSV-1 replication and spread in recipient cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2016. Vol. 113, No. 7. P. 894–901.
26. Huet A., Makhov A.M., Huffman J.B. [et al.]. Extensive subunit contacts underpin herpesvirus capsid stability and interior-toexterior allostery // Nat. Struct. Mol. Biol. 2016. Vol. 23, No. 6. P. 531–539.
27. Human herpesviruses: Biology, therapy, and immunoprophylaxis / Ed. by Arvin A., Campadelli-Flume G., Mocarski E. [et al.]. Cambridge: Cambridge University Press, 2007. 1431 p.
28. Itzhaki R.F. Herpes simplex virus type 1 and Alzheimer’s disease: Possible mechanisms and signposts // FASEB Journal. 2017. Vol. 8, No. 31. P. 3216–3226.
29. Itzhaki R.F., Lathe R., Balin B.J. [et al.]. Microbes and Alzheimer’s disease // J. Alzheimers Dis. 2016. Vol. 51, No. 4. P. 979–984.
30. Kharkwal H., Smith C.G., Wilson D.W. Herpes simplex virus capsid localization to ESCRT-VPS4 complexes in the presence and absence of the large tegument protein UL36p // J. Virol. 2016. Vol. 90, No. 16. P. 7257–7267.
31. Kingchington P.R., St Leger A.J., Guedon J-M.G., Hendricks R.L. Herpes simplex virus and varicella zoster virus, the house guests who never leave // Herpesviridae. 2012. Vol. 3. No. 5. doi:
10.1186/2042-4280-3-5.
32. Kukhanova M.K., Korovina A.N., Kochetkov S.N. Human herpes simplex virus: Life cycle and development of inhibitors. // Biochemistry (Moscow). 2015. Vol. 79, No. 13. P. 1635–1652.
33. Laine R.F., Albecka A., van de Linde S. [et al.]. Structural analysis of herpes simplex virus by optical super-resolution imaging // Nat. Commun. 2015. Vol. 6. Article No. 5980. doi: 10.1038/ ncomms6980.
34. Le Goaster J., Bouree P., El Sissy F.N. [et al.]. HSV-1/HSV-2 infection-related cancers in Bantu populations driving HIV-1 prevalence in Africa: Tracking the origin of AIDS at the onset of the 20th century. // Case Rep. Oncol. 2016. Vol. 9, No. 3. P. 815–825.
35. Licastro F., Porcellini E. Persistent infections, immune-senescence and Alzheimer’s disease // Oncoscience. 2016. Vol. 3, No. 5–6. P. 135–142.
36. Marcus A., Golani L., Ojha N.K. [et al.]. Varicella-zoster virus expresses multiple small noncoding RNAs // Journal of Virology. 2017. Vol. 24, No. 91. P. 894–901.
37. Mingo R.M., Han J., Newcomb W.W., Brown J.C. Replication of herpes simplex virus: egress of progeny virus at specialized cell membrane sites // J. Virol. 2012. Vol. 86, No. 13. P. 7084–7097.
38. Mori I., Nishiyama Y. Herpes simplex and varicella-zoster virus: why do these human alphaperpesviruses behave so differently from one another? // Rev. Med. Virol. 2005. Vol. 15, No. 6. P. 393–406.
39. Munawwar A., Singh S. Human herpesviruses as copathogens of HIV infection, their role in HIV transmission, and disease progression // J. Lab. Physicians. 2016. Vol. 8, No. 1. P. 5–18.
40. Piedade D., Azevedo-Pereira J.M. The role of microRNAs in the pathogenesis of herpesvirus infection // Viruses. 2016. Vol. 8, No. 6. P. 1–32.
41. Radtke K., Kieneke D., Wolfstein A. [et al.]. Plus- and minusend directed microtubule motors bind simultaneously to herpes simplex virus capsids using different inner tegument structures // PLoS Pathog. 2010. Vol. 6. No. 7. doi: 10.1371/journal. ppat.1000991.
42. Rekabdar E., Tunback P., Liljeqvist J.-A. [et al.]. Dichotomy of glycoprotein G gene in herpes simplex virus type 1 isolates // J. Clin. Microbiol. 2002. Vol 40, No. 9. P. 3245–3251.
43. Runthala A., Singh A.K. Tegument based in-silico drug targeting of herpes simplex virus-1 // Saratov Journal of Medical Scientific Research. 2010. Vol. 2, No. 6. P. 353–357.
44. Sadzot-Delvaux C., Rentier B. The role of varicella zoster virus immediate-early proteins in latency and their potential use as components of vaccines // Arch. Virol. Suppl. 2001. No. 17. P. 81–89.
45. Scrima N., Lepault J., Boulard Y. [et al.]. Insights into herpesvirus tegument organization from structural analyses of the 970 central residues of HSV-1 UL36 protein // J. Biol. Chem. 2015. Vol. 290, No. 14. P. 8820–8833.
46. Szpara M.L., Gatherer D., Ochoa A. [et al.]. Evolution and diversity in human herpes simplex virus genomes // J. Virol. 2014. Vol. 88, No. 2. P. 1209–1227.
47. Thienkrua W., Todd C.S., Chonwattana W. [et al.]. Incidence of and temporal relationships between HIV, herpes simplex II virus, and syphilis among men who have sex with men in Bangkok, Thailand: An observational cohort // BMC Infectious Diseases. 2016. Vol. 16. P. 340–350.
48. Tomishima M. J., Smith G.A., Enquist L.W. Sorting and transport of alpha herpesviruses in axons // Traffic. 2011. Vol. 2, No. 7. P. 429–436.
49. Wang K., Goodman K.N., Li D.Y. [et al.]. A herpes simplex virus 2 (HSV-2) gD mutant impaired for neural tropism is superior to an HSV-2 gD subunit vaccine to protect animals from challenge with HSV-2 // J. Virol. 2016. Vol. 90, No. 1. P. 562–574.
50. Yun S.J., Jeong P., Kanq H.W. [et al.]. Increased expression of herpes virus-encoded hsv1-miR-H18 and hsv2-miR-H9-5p in cancer-containing prostate tissue compared to that in benign prostate hyperplasia tissue // Int. Neurourol. J. 2016. Vol. 20, No. 2. P. 122–130.
51. Zerboni L. Sen L., Oliver S.L., Arvim A.M. Molecular mechanisms of varicella zoster virus pathogenesis // Nat. Rev. Microbiol. 2014. Vol. 12, No. 3. P. 197–210.
52. Zhang D., Su C., Zheng C. Herpes simplex virus 1 serine protease VP24 blocks the DNA-sensing signal pathway by abrogating activation of interferon regulatory factor 3 // J. Virol. 2016. Vol. 90, No. 12. P. 5824–5829.

ИЗДАТЕЛЬСТВО: Медицина ДВ

Год основания: 1997  |  Выпусков в год: 4, Статей в выпуске: 30  |  ISSN печатной версии: 1609-1175  |  Подписной  индекс: 18410 (Агентство “Роспечать”)  |  Тираж: 1000 экз.

 

Close Panel