Home

Влияние эстрадиола на временную организацию микроциркуляторного русла яичников крыс

Автор: Каргалова Е.П., Коцюба А.Е., Черток В.М., Момот Л.Н., Храмова И.А.

  Индекс УДК: 6111.651.08:611.16.08:615.357 |   Индекс DOI: 10.17238/PmJ1609-1175.2019.1.41–45 |Страницы: 41–45 | Полный текст статьи. PDF файл | Скачать PDF 

Аннотация:

Цель исследования: изученение динамики структурной организации микроциркуляторного русла яичников крыс в разное время суток и при воздействии эстрадиола. Материал и методы. Работа выполнена на яичниках двух групп половозрелых самок-крыс линии Вистар: контрольной (n=24), животных которой исследовали в 2, 6, 10, 14, 18, 22 часа, и экспериментальной (n=20) – после введения масляного раствора эстрадиола дипропионата в ночное (2 и 6 часов) и дневное (14 и 18 часов) время. Вычисляли активность щелочной фосфатазы и НАДФ-диафоразы (НАДФ-д) в стенке сосудов, суммарную длину энзимпозитивных сосудов в корковом веществе яичников, относительную плотность тучных клеток. Результаты исследования. В ночные и утренние часы в корковом веществе яичников капилляры отличаются интенсивной реакцией на щелочную фосфатазу и НАДФ-д, а плотность расположения таких сосудов относительно высока. В дневные и вечерние часы энзимпозитивные сосуды встречаются реже, и среди них преобладают капилляры с низкой или умеренной активностью ферментов. Помимо капилляров, на срезах, окрашенных на НАДФ-д, в межфолликулярных зонах и строме яичников выявляются тучные клетки. Введение эстрадиола вызывает повышение активности щелочной фосфатазы и НАДФ-д в стенке капилляров, увеличение плотности перифолликулярной сосудистой сети и тучных клеток. При этом значения активности ферментов и число тучных клеток увеличивааются на 8–12 % больше, чем суммарная длинна микроциркуляторного русла. Обсуждение полученных данных. Введение эстрадиола сопровождается перестройкой структуры сосудистого сплетения коркового вещества яичника с повышением активности щелочной фосфатазы и НАДФ-д в стенке микрососудов, увеличением плотности энзимпозитивной капиллярной сети и числа тучных клеток, среди которых нередко встречаются дегранулированные формы. Изменения структурных элементов яичника выражены в большей степени при введении эстрадиола в дневные часы.

Ссылки на авторов:

Е.П. Каргалова, А.Е. Коцюба, В.М. Черток, Л.Н. Момот, И.А. Храмова
Тихоокеанский государственный медицинский университет (690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2)

Черток Виктор Михайлович – д-р мед. наук, профессор, заведующий кафедрой анатомии человека ТГМУ; e-mail: Этот адрес электронной почты защищен от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.


1. Гинекология. Национальное руководство / под ред. Г.М. Савельевой, Г.Т. Сухих, В.Н. Cерова [и др.]. 2-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2017. 1008 с. 
2. Каргалова Е.П., Момот Л.Н., Вольская Н.В. Морфологические особенности микрососудов яичников при воздействии экзогенных стероидов // Журнал анатомии и гистопатологии. 2015. Т. 4, № 3. С. 56. 
3. Ларюшкина А.В., Черток В.М. Особенности биологических ритмов тканевых базофилов в различных областях твердой оболочки головного мозга крыс // Бюл. эксперим. биол. и мед. 2000. Т. 129, № 1. С. 96–99. Laryushkina A.V., Chertok V.M. Biological rhythms of tissue basophils in various sites of rat dura mater // Bull. Experim. Biol. Med. 2000. Vol. 129, No. 1. С. 83–85.
4. Храмова И.А., Черток В.М., Коцюба А.Е., Черток А.Г. Структурная организация кровеносной системы матки // Тихоокеанский медицинский журнал. 2018. № 3. С. 13–23. 
5. Черток В.М., Зенкина В.Г. Регуляция функций яичников: участие газовых трансмиттеров NO, СО и H2S // Успехи физиол. наук. 2015. Т. 46, № 4. С. 74–89. 
6. Черток В.М., Зенкина В.Г., Каргалова Е.П. Функциональная морфология яичника. Владивосток: Медицина ДВ, 2015. 154 с. 
7. Черток В.М., Немков Ю.К., Черток А.Г. Внутриорганное кровеносное русло матки. Владивосток: Медицина ДВ, 2018. 208 с. 
8. Черток В.М., Черток А.Г., Зенкина В.Г. Эндотелиозависимая регуляция ангиогенеза // Цитология. 2017. Т. 59, № 4. С. 243–258. 
9. Fredette N.C., Meyer M.R., Prossnitz E.R. Role of GPER in estrogen-dependent nitric oxide formation and vasodilation // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2018. Vol. 176. Р. 65–72.
10. Krejza J., Mariak Z., Nowacka A. [et al.]. Influence of 17-betaestradiol on cerebrovascular impedance during menstrual cycle in women // J. Neurol. Sci. 2004. Vol. 221. Р. 61–67.
11. Lapointe J., Roy M., St-Pierre I. [et al.]. Hormonal and spatial regulation of nitric oxide synthases in the oviducts // Endocrinology. 2006. Vol. 147, Nо 12. P. 5600−5610.
12. Pastore M.B., Jobe S.O., Ramadoss J. [et al.]. Estrogen receptor-α and estrogen receptor-β in the uterine vascular endothelium during pregnancy: functional implications for regulating uterine blood flow // Semin. Reprod. Med. 2012. Vol. 30, Nо 1. Р. 46–61.
13. Tamanini C., Basini G., Grasselli F., Tirelli M. Nitric oxide and the ovary // J. Endocrinol. 2008. Vol. 199. Р. 307–316.
14. Theoharides T.C., Stewart J.M. Genitourinary mast cells and survival // Trans. Androl. Urol. 2015. Vol. 4, Nо. 5. Р. 579–586.
15. Tropea T., De Francesco E.M., Rigiracciolo D. [et al.]. Pregnancy augments G protein estrogen receptor (GPER) induced vasodilation in rat uterine arteries via the nitric oxide - cGMP Signaling Pathway // PLoS One. 2015. Vol. 10, Nо. 11. Р. e0141997.

ИЗДАТЕЛЬСТВО: Медицина ДВ

Год основания: 1997  |  Выпусков в год: 4, Статей в выпуске: 30  |  ISSN печатной версии: 1609-1175  |  Подписной  индекс: 18410 (Агентство “Роспечать”)  |  Тираж: 1000 экз.

 

Close Panel